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创模高间质肿瘤模型

创模高间质肿瘤模型

概要:
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肿瘤组织微环境(TME)包括多种癌相关成纤维细胞(CAF),浸润免疫细胞及细胞外基质(图1)。其中CAF及胶原基质产物是结缔组织增生性癌症基质的主要成分,占肿瘤肿块的很大部分1,2。CAF具有促炎功能,并与于癌细胞发生主动串扰3。这些CAF细胞能够通过分泌促炎因子4、趋化因子、生长因子、重塑细胞外基质等旁分泌因子促进肿瘤细胞生长、血管生成和侵袭5,6。还能促进TME中的调节性免疫细胞来帮助肿瘤建立免疫抑制微环境7,8

 

此外CAF也与肿瘤耐药性相关。其影响耐药性的的机制包括(1)分泌可溶性因子;(2)重塑细胞外基质(ECM);(3)重编程肿瘤细胞的代谢过程;(4)诱导肿瘤细胞的表观遗传修饰;(5)递送外泌体(图 2)9 。 因此,CAF细胞在肿瘤治疗中也受到。

 

 

然而,CDX模型和PDX模型中间质细胞的比例较低,导致常用的小鼠模型不能模拟临床中的基质增殖和组织学特征10,11。 其中PDX模型中间质细胞比例约10-20%,CDX模型往往在10%左右。11 这为针对CAF相关的抗肿瘤药物开发制造了严重困难。CAF细胞往往来源于终归浸润的间充质干细胞(MSC)12,13,14 。365体育官方唯一入口基于人MSC与肿瘤细胞共建,构建了高间质细胞肿瘤移植模型。或可为相关研究提供便利可靠的研发工具。

在Miapaca2细胞与间充质干细胞共建和单独Miapaca-2细胞接种相比,肿瘤生长速度增加,且肿瘤生长均一度显著增加。间充质干细胞单独接种未产生肿瘤。

 

 

实验终点H.E.检测:Miapaca-2细胞和MSC共建肿瘤的组织结构与Miapaca-2细胞单独接种的肿瘤相比更加丰富。

 

 

实验终点马松染色:马松染色结果显示,在MSC与miapaca-2细胞共建肿瘤中,有更多成纤维细胞结构。

 

 

实验终点流式分析:

•CD105作为间充质干细胞marker,在实验终点时混合MSC接种的肿瘤中略微上升,但总体比例较低。这可能是接种的间充质干细胞已经发生分化导致的。

•此外,在混合MSC接种的miapaca-2肿瘤中,鼠源免疫细胞浸润数量显著降低。这可能显示了间充质干细胞混合接种降低了肿瘤的免疫浸润,这可能与肿瘤生长稳定性及速度均增加,相关,这可能是由于共接种MSC引起更多肿瘤相关成纤维细胞CAF或间质细胞增加导致的。

该模型通过MSC与肿瘤细胞共建,提供了一个可以大幅度在肿瘤中增加间质细胞的方法,该方法可以适用于创模各种肿瘤细胞系模型或PDX模型。如需了解创模高间质肿瘤模型的更多详细信息,请联系我们。

 

Reference

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2 Erez N, Truitt M, Olson P, Arron ST, Hanahan D. Cancer-associated fibroblasts are activated in incipient neoplasia to orchestrate tumor-promoting inflammation in an NF-kappaB-dependent manner. Cancer Cell. (2010) 17:135–47. doi: 10.1016/j.ccr.2009.12.041

3 Sherman MH, Yu RT, Engle DD, Ding N, Atkins AR, Tiriac H, et al. Vitamin D receptor-mediated stromal reprogramming suppresses pancreatitis and enhances pancreatic cancer therapy. Cell. (2014) 159:80–93. doi: 10.1016/j.cell.2014.08.007

4 Sherman MH, Yu RT, Engle DD, Ding N, Atkins AR, Tiriac H, et al. Vitamin D receptor-mediated stromal reprogramming suppresses pancreatitis and enhances pancreatic cancer therapy. Cell. (2014) 159:80–93. doi: 10.1016/j.cell.2014.08.007

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6 Goetz JG, Minguet S, Navarro-Lerida I, Lazcano JJ, Samaniego R, Calvo E, et al. Biomechanical remodeling of the microenvironment by stromal caveo lin-1 favors tumor invasion and metastasis. Cell. (2011) 146:148–63. doi: 10.1016/j.cell.2011.05.040

7 Mao XQ, Xu J, Wang W, Liang C, Hua J, Liu J, et al. Crosstalk Between Cancer-Associated Fibroblasts and Immune Cells in the Tumor Microenvironment: New Findings and Future Perspectives. Mol Cancer (2021) 20(1):131. doi: 10.1186/s12943-021-01428-1

8 Zitvogel L, Tesniere A, Kroemer G. Cancer Despite Immunosurveillance: Immunoselection and Immunosubversion. Nat Rev Immu nol (2006) 6(10):715–27. doi: 10.1038/nri1936

9 Tze-Sian Chan1,2,3,4 Yuval Shaked5,6 Kelvin K. Tsai1,2,3,7,8 Targeting the Interplay Between Cancer Fibroblasts, Mesenchymal Stem Cells, and Cancer Stem Cells in Desmoplastic Cancers Front. Oncol., 31 July 2019 Volume 9 - 2019 https://doi.org/10.3389/fonc.2019.00688

10 Akashi, Y. et al. Histological advantages of the tumor graft: a murine model involving transplantation of human pancreatic cancer tissue fragments. Pancreas 42, 1275–1282. https://doi.org/10.1097/MPA.0b013e318296f866 (2013).

11 Delitto, D. et al. Patient-derived xenograft models for pancreatic adenocarcinoma demonstrate retention of tumor morphology through incorporation of murine stromal elements. Am. J. Pathol. 185, 1297–1303. https://doi.org/10.1016/ j.ajpath.2015.01.016 (2015).

12 Liotta LA, Kohn EC. The microenvironment of the tumour-host interface. Nature. (2001) 411:375–9. doi: 10.1038/35077241

13 Kalluri R, Zeisberg M. Fibroblasts in cancer. Nat Rev Cancer. (2006) 6:392–401. doi: 10.1038/nrc1877

14 Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. (1999) 284:143–7. doi: 10.1126/science.284.5411.143

关键词: 高间质肿瘤模型 肿瘤模型

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